大小鼠采血方法大全:常用采血部位、操作步骤与注意事项


养鼠人必看!五种采血方式全解析

大小鼠采血是动物实验中的必备技能,常用方式包括尾尖采血、眼眶静脉丛采血、颌下静脉采血、隐静脉采血和心脏采血。小鼠循环血量约72 ml/kg(25g成年小鼠约1.8 ml),大鼠约64 ml/kg(250g成年大鼠约16 ml),单次采血量建议不超过循环血量的10%,失血超过15%可能引发血量减少性休克。各采血方式在采血量、是否需要麻醉、创伤程度和适用场景上各有不同:尾尖采血约0.1 ml适合血糖动态监测,眼眶静脉丛采血0.2-0.3 ml适合中等量连续监测,颌下静脉采血0.2-0.5 ml无需麻醉,隐静脉采血适合小量反复取样,心脏采血0.8-1.0 ml适用于终末期大量取血。多点采血时每周不超过循环血量的7.5%,采集10%循环血量后需约2周恢复。

本文目录

采血前须知:单次采血量与采血间隔

尾尖采血

眼眶静脉丛采血

颌下静脉采血

隐静脉采血

心脏采血

如何选择采血方式?

采血,是一个必备的动物实验技能。根据采血部位不同,大小鼠采血大致可分为:尾尖采血、眼眶静脉丛采血、颌下静脉采血、隐静脉采血、心脏采血等。本期,小编就给大家系统盘点大小鼠采血的相关知识——从采血量计算到各方式的操作要点,一次讲清楚。

1. 采血前须知:单次采血量与采血间隔

· 循环血量

小鼠约72 ml/kg。以25g成年小鼠为例,循环血量约1.8 ml。

大鼠约64 ml/kg。以250g成年大鼠为例,循环血量约16 ml。


大小鼠的循环血量-南模生物
表1. 大小鼠的循环血量

· 建议采血量

状况良好的小鼠,采血量建议不超过循环血量的10%。有研究表明失血超过15%以上,实验动物会发生血量减少性休克。以25g成年小鼠为例,10%的循环血量约为0.2 ml


 大小鼠建议最大采血量-南模生物
表2. 大小鼠建议最大采血量

· 恢复期

采集10%的循环血量后,大约需要2周时间恢复。不同采血量对应的恢复期如下:


大小鼠采血量及恢复期-南模生物
表3. 大小鼠采血量及恢复期

· 多点采血原则

每周最大采血量不超过循环血量的7.5%;每两周最大采血量不超过循环血量的10%。

2. 尾尖采血


实验小鼠尾尖采血-南模生物
图4.  尾尖采血

操作要点:

· 麻醉小鼠后,用温水擦拭尾巴引起轻微血管扩张,但水温不要过高。

· 用无菌手术刀、刀片或锋利的剪刀,快速截断小鼠尾尖0.5-1 cm。如需多次采血,之后每次仅需截除2-3 mm。

· 可从尾部向尾尖方向按摩以增加血流,但这会降低血样质量,增加溶血风险。

· 可用毛细采血管收集血液,或直接滴入收集管中。

· 采血结束后,按压伤口或使用止血剂(如硝酸银)止血。

· 每次采血量约可达0.1 ml。

应用: 适用于所需血量少的连续多次采血,如血糖或血常规的动态检测。

3. 眼眶静脉丛采血


实验小鼠眼眶静脉丛采血-南模生物
图5. 眼眶静脉丛采血

操作要点:

· 小鼠经气体麻醉后,左手拇指及食指压迫小鼠颈部两侧,使眼球突出、眼眶后静脉丛充血。也可将小鼠置于侧卧位,拇指与食指分别置于小鼠头顶和下颌,将皮肤向后及向下拉。

· 抓握时避免对气管施压,否则可能影响小鼠呼吸。

· 将毛细采血管置于内侧眼角处,以与鼻翼平面成30-45度刺入。

· 在轻轻旋转采血管的同时施加压力,血液将通过毛细作用流入采血管。

· 不能刺得过深,一般2-3 mm即可。

· 采血结束后,立即松开手指对小鼠的压迫,使眼球复位,同时将采血器拔出。

· 可用干棉球压住眼眶,确保止血。

· 一般采血量可达0.2-0.3 ml。

应用: 适用于需中等量血液、避免小鼠死亡的血液指标连续监测。

4. 颌下静脉采血


实验小鼠 颌下静脉采血-南模生物
图6.  颌下静脉采血

操作要点:

· 保定小鼠,可将小鼠侧卧,使头部尽量固定。

· 在小鼠嘴角沿线与外眼角线交汇处找到颌下静脉的大致位置,会发现一个无毛的小点(类似酒窝),基本位于嘴角远端稍低于下巴线。

· 针保持垂直于皮肤表面刺入,深度不超过针头的斜面。

· 拔出针头后血液流出,可使小鼠头部低于心脏高度以方便采血。

· 可直接使血液滴入采集管,也可使用毛细采血管。

· 采血结束后,按压止血。

· 一般采血量为0.2-0.5 ml。

应用: 小量反复采血,无需麻醉,适用于所需血量少的连续多次采血。

5. 隐静脉采血


实验小鼠隐静脉采血-南模生物
图7.  隐静脉采血

操作要点:

· 将小鼠置于固定管或架中,保持后腿可自由活动,剃除跗部的毛。

· 为使膝盖与踝关节之间的隐静脉更明显,可在后腿膝盖以上使用止血带。在近尾侧的皮肤表面可找到隐静脉。

· 针垂直于皮肤表面扎破血管,不要进针过深以免刺穿肌肉或碰到骨头。

· 血液会从入针处慢慢流出,用毛细采血管收集,并松开止血带。

· 采血结束后,按压伤口或使用止血剂(如硝酸银)止血,将小鼠放回笼内。


实验小鼠应用: 小量反复采血,无需麻醉,适用于所需血量少的连续多次采血。-南模生物
图8.  应用: 小量反复采血,无需麻醉,适用于所需血量少的连续多次采血。

6. 心脏采血


实验小鼠心脏采血-南模生物
图9.  心脏采血

一般有3种心脏采血姿势:

· 姿势一: 托起小鼠躯干使身体垂直于地面,身体直立以防止心脏偏转或胸部扭曲。使用1 ml注射器和22g针头,将针头从胸部中央向下5 mm处插入,深度5-10 mm,注射器与胸部保持25-30度。

· 姿势二: 使小鼠仰卧,通过胸骨垂直插入针头。

· 姿势三: 使小鼠侧卧,垂直于胸壁插入针头。

操作提示:

· 如果血液没有立刻进入注射器,可轻轻抽空针管产生真空区。

· 当注射器中出现血液时,将针管保持静止并轻轻抽拉活塞芯杆以获得更多血液。

· 一般可采到0.8-1.0 ml血液。

应用: 适用于需血量大的实验终末期动物采血,常用于血常规、免疫、生化指标的检测。

如何选择采血方式?


实验小鼠不同采血方式的特点概况-南模生物
图10.  不同采血方式的特点概况

看完了方法,别忘了要练习哦!祝愿大家采血顺利~

参考文献

[1] Guidelines for the survival bleeding of mice and rats. (2010).

[2] Diehl K. H. A good practice guide to the administration of substances and removal of blood, including routes and volumes. J.Appl.Toxicol. 21, 15-23 (2001).

[3] Janet H, et al. Methods of Blood Collection in the Mouse. Lab Animal. 29(10):47-53. (2010).

[4] Joslin O.T, et al. Blood collection techniques in exotic small animals. Journal of Exotic Pet Medicine. 18:2. 117-139. (2009).

[5] Hem A., et al. Saphenous vein puncture for blood sampling of the mouse, rat, hamster, gerbil, guinea pig, ferret and mink. Laboratory Animals. 32. 364-368. (1998).



你也可能感兴趣

Tamoxifen诱导Cre-ERT2小鼠 使用指南

Cre-ERT2在无Tamoxifen诱导的情况下,在细胞质内处于无活性状态;当Tamoxifen诱导后,Tamoxifen的代谢产物4-OHT(雌激素类似物)与ERT结合,可使Cre-ERT2进核发挥Cre重组酶活性。

查看
【小鼠大学问】基因工程小鼠的命名规则

常见的基因工程小鼠可以分为两种命名方式,包括基因定点修饰的小鼠命名,比如:敲除、敲入、点突变等等,和随机转基因的小鼠命名。

查看
Cre-lox系统介绍及使用汇总

你一定听说过Cre-lox重组系统,无论你是否直接进行过基因操作。由于Cre-lox系统具有操作简单、重组率高的优点,如今已经成为体内外遗传操作的强有力工具。利用Cre-lox系统,可以在特定细胞、组织或整个生物体,甚至在特定时间点敲除或表达某个基因,实现对特定基因的时空特异性操作,这对基因功能的研究和人类疾病动物模型的建立都具有深刻影响。

查看