大鼠颈静脉泵注给药操作全流程:插管手术、封管固定与注射泵连接详解


大鼠颈静脉泵注给药是成瘾模型、药代动力学研究及长期静脉给药实验中的核心操作技术。本文详细拆解颈静脉插管手术的五个关键步骤——术前麻醉与备皮、远心端结扎、颈静脉置管、插管皮下固定及注射泵连接给药,配合实操图片逐步讲解,帮助实验人员掌握规范操作要点,提高插管成功率与导管通畅率。

目录:

01 术前准备

02 结扎远心端

03 颈静脉置管

04 插管固定与术后恢复

05 注射泵给药

南模生物颈静脉泵注给药服务

01 术前准备


实验小鼠 术前准备-南模生物
实验小鼠 术前准备

· 麻醉 使用舒泰50 + 盐酸塞拉嗪麻醉大鼠。待大鼠进入麻醉状态后,在其眼部涂抹适量眼膏,防止角膜干燥。

· 备皮与消毒 剃除大鼠颈部、背部毛发,涂抹碘伏、酒精进行消毒处理。

02 结扎远心端


实验小鼠 结扎远心端-南模生物
实验小鼠 结扎远心端

· 暴露颈静脉 用无菌手术刀片或手术剪刀切开大鼠皮肤,用电刀及时止血,暴露皮下结缔组织。逐层钝性分离至看见大鼠颈静脉。

· 游离与结扎 游离出颈静脉后,用缝合线结扎远心端,以动脉夹夹住近心端,使血管充血膨起,便于后续插管操作。

03 颈静脉置管


实验小鼠  颈静脉置管-南模生物
实验小鼠  颈静脉置管

· 剪口插管距离远心端线结前 3 mm 处剪一小口,插入装有生理盐水注射液的硅胶导管。

· 固定导管 松去动脉夹,确认导管通畅后,结扎导管和颈静脉近心端以固定导管位置。

04 插管固定与术后恢复


实验小鼠 插管固定与术后恢复-南模生物
实验小鼠 插管固定与术后恢复

· 封管处理 使用肝素葡萄糖溶液封管,再用插管堵头封闭插管注射端。

· 皮下牵引与缝合 将插管经皮下牵引至大鼠后背肩胛骨附近,留出合适长度,缝合固定插管,并用碘伏消毒创口。

· 术后护理 术后将大鼠转移至保温垫上 3–5 h,待状态完全恢复后再放回饲养室饲养观察。

05 注射泵给药

实验小鼠 注射泵给药-南模生物
实验小鼠 注射泵给药


· 恢复期 术后等待 3~5 天恢复期。

· 连接给药装置 准备中空管,将中空管的两端分别连接注射器上的注射导管与大鼠静脉插管注射端(拔出堵头,插入中空连接管)。

· 启动给药 将大鼠放置在洁净的独立笼盒内,设置注射泵参数,开始给药。给药期间,动物可自由活动。

· 给药结束 给药完毕后,拔出中空连接管,插入堵头,固定导管,将大鼠放回饲养室观察休息。

搞不定?南模生物帮你做

觉得操作复杂、没把握?南模生物提供大鼠颈静脉泵注给药服务,帮你省去手术操作的麻烦,直接拿到可用于实验的动物模型。

如有需求,在南模生物公众号在线咨询。点击阅读更多相关动物给药文章!

关于我们

上海南方模式生物科技股份有限公司(Shanghai Model Organisms Center, Inc.,简称"南模生物"),成立于 2000 年 9 月,是一家上交所科创板上市高科技生物公司(股票代码:688265),始终以编辑基因、解码生命为己任,专注于模式生物领域,打造了以基因修饰动物模型研发为核心,涵盖多物种模型构建、饲养繁育、表型分析、药物临床前评价等多个技术平台,致力于为全球高校、科研院所、制药企业等客户提供全方位、一体化的基因修饰动物模型产品解决方案。



你也可能感兴趣

Tamoxifen诱导Cre-ERT2小鼠 使用指南

Cre-ERT2在无Tamoxifen诱导的情况下,在细胞质内处于无活性状态;当Tamoxifen诱导后,Tamoxifen的代谢产物4-OHT(雌激素类似物)与ERT结合,可使Cre-ERT2进核发挥Cre重组酶活性。

查看
【小鼠大学问】基因工程小鼠的命名规则

常见的基因工程小鼠可以分为两种命名方式,包括基因定点修饰的小鼠命名,比如:敲除、敲入、点突变等等,和随机转基因的小鼠命名。

查看
Cre-lox系统介绍及使用汇总

你一定听说过Cre-lox重组系统,无论你是否直接进行过基因操作。由于Cre-lox系统具有操作简单、重组率高的优点,如今已经成为体内外遗传操作的强有力工具。利用Cre-lox系统,可以在特定细胞、组织或整个生物体,甚至在特定时间点敲除或表达某个基因,实现对特定基因的时空特异性操作,这对基因功能的研究和人类疾病动物模型的建立都具有深刻影响。

查看