“一针见血”全靠这篇大小鼠采血秘籍


采血,是除了给药以外的另一个必备动物实验技能。根据采血的部位不同,大小鼠采血大致可以分为以下几种方式:尾尖采血、眼眶静脉丛采血、颌下静脉采血、隐静脉采血、心脏采血等。本期,小编就给大家系统性的盘点下大小鼠采血的相关知识。首先,我们来看看在动手采血之前需要了解的tips?


单次采血量,采血间隔

小鼠的循环血量大约是72ml/kg。以25g的成年小鼠为例,它的循环血量大约为1.8ml。大鼠的循环血量大约是64ml/kg。以250g的成年大鼠为例,它的循环血量大约为16ml。

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表1. 大小鼠的循环血量


采集10%的循环血量之后,大约需要2周时间恢复。

状况良好的小鼠一般采血量建议不超过循环血量的10%。有研究表明失血超过15%以上实验动物会发生血量减少性休克。以25g的成年小鼠为例,10%的循环血量大约是0.2ml。

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表2. 大小鼠建议最大采血量


采血之后,小鼠需要一段时间的恢复,其血液指标才会恢复到正常水平。下面的表格列出了不同采血量对应的恢复期:

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表3. 大小鼠采血量及恢复期


如果需要多点采血,每周最大采血量最好不超过循环血量的7.5%;每两周最大采血量不超过循环血量的10%。



尾尖采血

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· 麻醉小鼠后,用温水擦拭尾巴,引起轻微的血管扩张。但水温不要过高。

· 用无菌手术刀、刀片或锋利的剪刀,快速截断小鼠尾尖0.5-1cm。如果需要多次采血,之后每次仅需截除2-3mm。

· 可以从尾部向尾尖方向按摩,以增加血流。但是,这会降低血样的质量,增加溶血的风险。

· 可以用毛细采血管收集血液,或直接滴入收集管中。

· 采血结束后,按压伤口或使用止血剂(如硝酸银)来止血。

· 每次采血量大约可达0.1ml。



应用:适用于所需血量少的连续多次采血,如血糖或血常规的动态检测。



眼眶静脉丛采血

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· 小鼠经气体麻醉后,左手拇指及食指压迫小鼠的颈部两侧,使眼球突出,眼眶后静脉丛充血。也可以将小鼠放置在侧卧位,拇指与食指分别置于小鼠头顶和下颌,将皮肤向后及向下拉。

· 抓握时要避免对气管施压,否则可能会影响小鼠呼吸。

· 将毛细采血管置于内侧眼角处,并且以与鼻翼平面成30-45度刺入。

· 在轻轻旋转采血管的同时施加压力。血液将通过毛细作用流入采血管。

· 不能刺地过深,一般2-3mm即可。

· 采血结束后,立即松开手指对小鼠的压迫,使眼球复位,同时将采血器拔出。

· 可用干棉球压住眼眶,确保止血。

· 一般眼眶静脉丛采血量可以达到0.2-0.3ml。



应用:适用于需中等量的血液、避免小鼠死亡的血液指标的连续监测。



颌下静脉采血

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· 保定小鼠,可将小鼠侧卧,使小鼠头部尽量固定。

· 在小鼠嘴角沿线与外眼角线橡胶处找到颌下静脉的大致位置,会发现一个无毛的小点,有点像酒窝。基本位于嘴角远端稍低于下巴线。

· 针保持垂直于皮肤表面,刺入皮肤。深度不超过针头的斜面。

· 拔出针头后,血液就会流出。为方便采血,可使小鼠头部低于心脏高度。

· 可以直接使血液滴入采集管,也可以使用毛细采血管。

· 采血结束后,按压以止血。

· 一般采血量为0.2-0.5ml。



应用:小量反复采血,无需麻醉,适用于所需血量少的连续多次采血。



隐静脉采血

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· 将小鼠置于固定管或架中,但保持后腿可自由活动,剃除跗部的毛。

· 为使膝盖与踝关节之间的隐静脉更加明显,可以在后腿膝盖以上使用止血带。在近尾侧的皮肤表面可以找到隐静脉。

· 针垂直于皮肤表面扎破血管。不要进针过深,以免刺穿肌肉或碰到骨头。

· 血液会从入针处慢慢流出,用毛细采血管收集,并松开止血带。

· 采血结束后,按压伤口或使用止血剂(如硝酸银)以止血,并将小鼠放回笼内。

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应用:小量反复采血,无需麻醉,适用于所需血量少的连续多次采血。


心脏采血

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一般有3种心脏采血的姿势:


1、托起小鼠躯干使身体垂直与地面。身体直立以防止心脏的偏转或胸部的扭曲。使用1毫升注射器和22g针头。将针头从胸部中央向下5mm处插入,深度5-10mm,将注射器与胸部保持25-30度。

2、使小鼠仰卧,通过胸骨垂直插入针头。

3、使小鼠侧卧,垂直于胸壁插入针头。


· 如果血液没有立刻进入注射器,可以轻轻抽空针管,产生一个真空区。

· 当注射器中出现血液时,将针管保持静止并轻轻地抽拉活塞芯杆,以获得更多地血液。

· 一般可以采到0.8-1.0ml血液。



应用:适用于需血量大的实验终末期的动物采血,常用于血常规、免疫、生化指标的检测。



这些采血方式应该怎么选择呢?

我们再来总结一下它们各自有什么特点。

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表4.不同采血方式的特点概况


看完了方法,别忘了要练习哦!


参考文献

1、Guidelines for the survival bleeding of mice and rats.(2010).

2、Diehl K. H. A good practice guide to the administration of substances and removal of blood, including routes and volumes. J.Appl.Toxicol.21,15-23(2001).

3、Janet H, et al. Methods of Blood Collection in the Mouse.Lab Animal.29 (10):47-53.(2010).

4、Joslin O.T,et al. Blood collection techniques in exotic small animals. Journal of Exotic Pet Medicine. 18:2. 117-139.(2009)

5、Hem A., et al. Saphenous vein puncture for blood sampling of the mouse, rat, hamster, gerbil, guinea pig, ferret and mink. Laboratory Animals. 32. 364-368. (1998)



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